1、具有倍压整流的机型，市电压正常的情况下错误地工作于倍压整流状态。
2、脉宽调整电路出现问题。
3、振荡定时电容容量下降。
4、主负载(行扫描电路)未工作，造成开关电源负载轻引起电压升高(仅适用于稳压调整环路间接取样的电源，即稳压取样不是直接取自B加输出)。
关于小分子蛋白的Western-blot问题，实验时的胶浓度，电压，转膜条件等等
大蛋白是一种分子量较大的蛋白质，其转膜需要一定的条件。以下是转膜的一般步骤及建议条件：
1 准备膜：准备合适的膜，一般可以选择PVDF（聚偏氟乙烯）或Nitrocellulose（硝酸纤维素）膜，根据实验需要选择不同孔径大小的膜。
2 样品处理：将待测蛋白质进行处理，如SDS-PAGE（聚丙烯酰胺凝胶电泳），以使得蛋白质在后续转膜操作中易于传递。
3 转膜操作：将样品挤压在膜上，一般需要注意以下条件：
- 转膜时间：转膜时间视实验目的而定，一般在1-2小时之间可以获得较好的转膜效果。
- 转膜电压：一般推荐使用100 V左右的电压，这可以保证较好的蛋白转膜效果，同时避免损坏膜的情况发生。
- 转膜缓冲液：转膜过程中需要使用适当的缓冲液，提供适宜的离子强度和pH，以便维持蛋白质的稳定性。
- 膜湿度：保持转膜膜的湿度，以防止转膜过程中膜的干燥，影响转膜效果。
4 蛋白固定：转膜完成后，可以对蛋白进行固定，以便后续进行Western blot等蛋白质检测方法。
总之，转膜条件的选择需要考虑实验的具体目的、样品性质和转膜膜的质量等因素。
我最小也只做过十几KD的。但是根据原理呢主要有以下注意事项：
1。当然是胶的浓度。9kda的话要适当增大，15-20%应该差不多吧。如果实在不行还能考虑用gradient gel。
2。二是转膜缓冲液，内要含20%甲醇，新鲜配制，反复使用的话注意甲醇会蒸发掉。如果连续使用的话两三次应该还可以。甲醇一是能够洗掉跑胶时泡透了的SDS(SDS使蛋白带负电，方便移动)，二是帮助蛋白固定到膜上面。它同时有收缩胶的孔径的副作用，但对小分子无影响。
3。三是膜的孔径。很多常规的膜孔径为045um。你如果做小分子，17kd以下都跑掉了，那你应该试试02um孔径的膜。有一个小诀窍是转膜时叠两张膜一起转，如果小分子蛋白跑过了前面一张膜，那总还有可能被后面一张膜抓到。
4。四是转膜时间。小分子的话就不要过夜转，采取100V一小时应该就可以了，注意降温。
